微核检测实验
遗传毒物或致突变因子作用于间期细胞染色质，有丝分裂染色体和纺锤体时，能导致染色体断裂成断片或整条染色体从纺锤体脱落和染色体子星群脱离，形成落后的孤立染色体，继而在分裂末期及以后的间期细胞中形成与主核脱离的徽核。 因此微核实质上是孤立畸变染色体在间期的存在形式。微核检测既可直接检测体内细胞，亦可利用培养细胞进行检测。
一、凡具分裂能力易于获得的培养细胞以及很多其它细胞都可用于显示微核
1. 人末梢血淋巴细胞培养
对检测环境中致突和致癌物非常简便和有效，对预报危害人体有害因素有重要意义。
2. 二倍体细胞
组织培养人工倍体成纤维细胞及其它细胞。
3. 动物骨髓细胞
哺乳动物骨髓多染性红细胞：可直接在体内给药后做细胞涂片显示微核，是目前最标准的微核指示细胞。
4. 动物肝细胞
哺乳动物肝细胞能代谢和活化多种药物，可用于检测间接致癌物。
5. 人口腔上皮细胞
人口腔粘膜脱落细胞：做口腔涂片后，直接染色显示微核，简便易行。
6. 植物细胞
洋葱根尖细胞、鸭跖草等用于检测环境致突变物、致癌物，简便有效。 二、检测微核的标准
1. 存在时相
微核必须在胞浆完整的间期细胞中，形态为圆形或椭圆形。
2. 体积
直径小于主核的1/5。
3. 与主核关系
与主核完全脱离。
4. 染色
染色与主核一致。
5. 计数
在高倍镜下，每例计数2000 个细胞，结果以含微核细胞的千分率表示。
1. 方法一
（1）采血
静脉采血0.5 ml，肝素抗凝，用小方瓶培养，加培养液5 ml；
培养液组成 为：含20 %小牛血清的Eagle液，加PHA 40 μg/ml；
（2）培养
置37 ℃温箱培养48 或72 小时，以1000 rpm离心8 分钟；
（3）固定
3 L 1甲醇/冰醋酸固定3 次，每次15 分钟，离心沉淀固定液；
（4）制片
冷冻载片滴片法制片、自然干燥；10 %Giemsa（pH6.8）染色15 分钟。
2. 方法二
（1）采血
肝素抗凝血0.5～0.6 ml，置10 ml试管中，加入血量一半的0.5 %甲基纤维素，充分混合；
（2）培养
置37 ℃温箱静置培养30 分钟，以2000 rpm离心10 分钟，去上清液；
（3）制片
做涂片，Wright法染色。
3. 方法三
（1）采血
用三棱针刺无名指取血0.6 ml，立即注入内径3 mm、长5 cm的血液沉淀 管中，用小玻棒搅拌除去纤维蛋白；
（2）加明胶
加入3 %的明胶（其量为血量的1/3或1/2），小心混匀，置37 ℃温箱 自然沉降50 分钟；
（3）吸去上清液、离心、沉淀物涂片、自然干燥、Wright染色30 分钟、再用Giemsa 染色2 分钟。
注意事项
1. 微核法简便易行，但仅适用于检测那些在细胞分裂时对纺锤体和染色体有影响的有关因素。
2. 对毒性小的物质可能不很敏感；微核检出率约有30 %的误差。
