核提取物的制备实验-基本方案
1a. 收集转瓶培养的细胞：将浓度为5~10×108细胞/l 的培养液用1 L 的塑料瓶1 850 g 离心20 min，将细胞收入50 ml 锥形离心管中（每管收2~3 L 培养液中的细胞）。进行步骤2。
1b. 收集单层培养的细胞：单层细胞长满后去掉培养液。用PBS洗1次。将细胞刮入新鲜PBS液里，倒进锥形离心管中。进行步骤2。
2. 1 850 g 离心10 min。
3a. 转瓶培养细胞：测量压紧后细胞的体积。将细胞重悬于约5倍于其pcv的PBS液中，1 850 g 离心10 min。进行步骤4。
3b. 单层培养细胞：测量pcv，进行步骤4。
4. 快速地将沉淀的细胞重悬于5倍体积的低渗缓冲液中，1 850 g 离心10 min。将细胞沉淀重悬于3倍于原pcv的低渗缓冲液中，放置在冰上10 min，让细胞肿胀。
5. 在Dounce氏玻璃匀浆器中用B号研杵缓馒上下抽提10次以上。用台盼蓝染色排斥法在显微镜下检査细胞裂解滑况（应大于80%~90%）。
6. 3 300 g 离心15 min，保留上清用来制备S-100细胞质提取物。
7. 测量第6步离心沉淀的压紧后的细胞核体积。用1/2 pnv体积的低盐缓冲液重悬细胞核（必要时用Dounce氏玻璃匀浆器匀浆一次）。
8. 在轻轻搅拌的同时，逐滴加入1/2 pnv体积的高盐缓冲液。终浓度应约为300 mmol/l。
9. 25 000 g 离心30 min，测量核提取物的电导率（用上请，见步骤10）。
10. 将核提取物加入透析管中，在50倍体积的透析液中进行透析，直到提取物的电导率和透析液一致为止（当提取物的KCl浓度达到100 mmol/l 时）。尽量缩短透析时间。
11. 将提取物从透析袋中移出45 000 g 离心20 min。
12. 用Bradford分析法测定上清中蛋白质的浓度。分装，浸入液氮中速冻，- 80℃保存。
