材料
无菌

生长培养基：含高浓度葡萄糖（4.5 g/L）的 Dulbecco's modifiled Eagle's 培养液（DMEM），添加 L-谷酰胺 2 mmol/L、10% 胎牛血清、100U/mL 青霉素及 100 μg/mL 链霉素

聚凝胺： 8 mg/mL
普通容器 ：培养瓶 25 cm²，75 cm²

反转录酶病毒载体的产生用材料
细胞系:
PG13
GP+E-86
反转录病毒载体 GCsam hTERT
转染用 htrt DNA
Tx 缓冲液 ：总量 20 mL，含有以下物质：

HEPES 0.5mol/L，pH 7.1   200μL
NaCl，5rnol/L   100μL
Na2 HPO4/NaH2PO4，1mol/L   3μL
UPW   1.7 mL

缓冲液 A：总量 20.04 mL，含有以下物质：

NaCl（5mol/L）   600μL
EDTA（0.5mol/L）40μL
Tris-HCl，pH7.5（0.5mol/L）400μL
UPW   19 mL

hMSC（人间充质干细胞）细胞的转导用材料
hMSC（人间充质干细胞）细胞
培养瓶 75 cm²
多孔板 6 孔
转导后用材料
用于冷冻保存的实验材料（见方案 20.1）
用于 DNA 指纹分析 (见方案 16.8) 或 DNA 图谱分析（见方案 16.9）或其他验证分析方法的实验材料（如方案 16.10）

PCR 试剂
DNA 100 μg/mL
10×PCR 缓冲液 L（含 Mg²⁺）
正向引物（2μmol/L）
反义引物（2μmol/L）
dNTP 混合物（10 mmol/L）
DNA 聚合酶
UPW

操作步骤
反转录酶病毒载体的产生
具有 hTERT 基因的反转录酶病毒载体通过两个步骤包装进入长臂猿白血病病毒（GALV）包装的细胞系 PG13。首先，使用 20 μg/mL htrtDNA（Geron）转染包装细胞系 GP+E-86，然后用上清液感染 PG13 细胞。

1. 6.7×105 GP+E-86 细胞系接种在一个小培养瓶（25 cm²）中。

2.GP+E-86 细胞系的转染
（a）将 280μL Tx 缓冲液加人每个管中（常用容器）。
（b）制备 DNA 管：

组成名称    DNA 浓度   15 μgDNA      缓冲液 A       CaCl₂ 2.5mol/L     总量
                       Z*μg/μL       X*μL            280-30-X                  30                280
* X×Z = 15 μg

（c）将 Tx 缓冲液逐滴加人含有 DNA 溶液的管内，轻轻地混合。
（d）在室温下孵育 30℃，使其产生沉淀。
（e）在每个含有 GP-E-86 细胞的 25 cm2 培养瓶中，加入 5 mL 新鲜培养液。
（f）轻轻加入混合液（Tx+DNA）至 GP+E-86 细胞，在 37℃ 孵育 4-6 h。
（g）在 25 cm² 培养瓶内，用 D-PBSA 小心地洗三次。
（h）加新鲜培养液至细胞中，在 37℃ 孵育过夜。

3. 更换细胞培养液，加 2 mL 新鲜培养液 (取代以前 5 mL 培养液)，以产生病毒。

4. 在进行第三步的同一天，将 1×104 个 PG13 细胞接种于 6 孔板的每个孔中。

5. 次日，从感染的 GP-E-86 细胞收获其上清液，加入最终浓度为 8 μg/mL 的多聚胺 (如 1 μg/mL 上清液)。

6. 用孔径 0.45μm 滤膜过滤上清液，将 2 mL 过滤液加至含 GP-E-86 细胞的每个孔中。

7. 在 32℃ 1000 g 离心培养板。

8. 在 37℃ 孵育过夜。

9. 次日，更换细胞的培养液。

hMSC 细胞的转导
1. 将 2×106 PG13 细胞种人 75 cm2 培养瓶中。

2. 次日，将 6 mL 新鲜培养液加至 PG13 细胞中。

3. 第三日，将 hMSC 细胞（约 2.5×104~7.5×104 个）加至 6 孔板中，用于转导。

4. 从包装的细胞收获上清液，加入最终浓度为 8 μg/mL 的多聚胺，用孔径 0.45μm 的滤膜过滤上清液。

5. 将 2 mL 过滤后的反转录病毒上清液加入 6 孔板的每个孔中。

6. 在 32℃ 1000 g 离心培养板，37℃ 孵育过夜。

7. 吸去逆转录病毒上清液，加入新鲜培养基。

转导后培养物的处理
1. 经过 10~12 次传代接种，未接受 hTERT 基因的细胞将死亡，剩余的细胞 则肯定已插入 hTERT 基因，具有 hTERT 基因的细胞将在传代过程中被选择出来。

2. 建议将细胞分装在安瓿中冷冻保存，建立一个转导细胞的贮备库，这些转导细胞处于不同的群体倍增（PI）水平（可与 PD 生长曲线相匹配）。这样做也可节省时间，因为如果发生污染就要丢弃培养的细胞，重新开始。

3. 在梅次传代培养时，用下列公式获得 PD，以建立 PD 生长曲线。

公式中的 PD 代表种群倍增的次数，In 是自然对数 Nstart 是细胞初始接种量，Nfinish 是细胞在传代培养过程中所获得的全部细胞数。
例 1，如果最初种入 2×105 个细胞，培养后增加至 3.2×106 个细胞，则：

如果按 1:4 的细胞量进行传代培养，则每次传代培养后的 Nfinish 将乘以 4。所以在上述例子中，假设有 10 次传代培养，Nfinish 就是（3.2×106）×4 的 10 倍，也就是 3.4×1012。
例 2，如果最初种入 2×105 个细胞，培养后可增加至 3.2×106 个细胞。以 1:4 的细胞址传代培养 10 次，则：

4. 在建立永生细胞系之后，必须检查其真实性，以确保其来源于最初的材料， 而不是由于交叉污染从实验室其他永生细胞系衍生而来（见 19.5 节）。这是能做到的，例如针对转移基因（hTERT）（见下）的 PCR 检测、DNA 指纹检 测（见方案 16. 8）或 DNA 图谱检测（见方案 16.9）。

hTERT 的 PCR
1. 溶解 PCR 试剂并保存在冰块中 

2. 对下列试剂进行仔细的混合，记住，一定要包括阳性对照（其他 hTERT 阳 性标本）和阴性对照（无 DNA 模板）
DNA1μL（100ng）   100 μg/mL
10×PCR 缓冲液（含 Mg2+）   2μL
正义引物   2μL
反义引物   2μL
dNTP 混合物（10 mmol/L）   0.4μL
DNA 多聚酶   0.1μL
UPW   12.5μL
最终体积为 20 mL（包括 DNA）

3. 将管子置于 PCR 仪器中，按以下步骤进行操作：90℃，3 min，首先进行变性作用；94℃，30s，再次进行变性作用；59℃，39s，进行复性；74 ℃，1 min，进行延伸；如此循环 30 个周期，然后是 74℃，1 min。

4. 将 PCR 产物在 1.5%~2% 琼脂糖凝胶中进行电泳。